대표적인 상업화된 박테리오신인 나이신은 Listeria monocytogenes 및 Staphylococcus aureus와 같은 병원성 세균에 대해 강력한 항균 활성을 보인다. 본 연구에서는 시판되는 나이신 제품을 박테리오파지 SAP84와 함께 병용 처리했을 때 S. aureus 억제에 대한 상승효과에 대하여 평가했다. S. aureus KCTC 3881 균주에 대해 나이신은 농도의존적으로 생균수를 감소시켰으며 18 IU/mL의 나이신은 대조구와 비교하여 6시간째에 4.03 Log CFU/mL의 균수가 감소된 반면, 동일 용량의 나이신이 박테리오파지 SAP84 (0.1 MOI)와 병용처리 되었을 때 5.54 Log CFU/mL의 생균수 감소가 관찰되었다. 또한 나이신과 SAP84 의 조합은 양상추에서 S. aureus 균주를 효과적으로 제어하는데 성공적으로 적용되었다.

본 연구는 항생제 내성 Salmonella Typhimurium CCARM 8009을 저해하기 위한 phage와 항생제 조합처리의 효과를 평가하였다. 디스크 확산법과 액체배지 희석법에 의해 phage와 항생제의 상승 저해효과를 측정하였고 배양을 통한 항생제 내성 유도를 평가하였다. Phage를 처리한 cefotaxime, chloramphenicol, ciprofloxacin, erythromycin의 디스크의 저해 구역은 각각 13.6%, 19.3%, 12.7%, 78.8% 로 증가되었다. Phage와 항생제 조합 처리에 의해 tetracycline, chloramphenicol, ciprofloxacin, erythromycin, streptomycin의 최소생육억제농도는 각각 64, 4, 0.0078, 64, 256 mg/mL으로 감소되었다. Phage와 항생제의 조합 처리는 항생제 내성 S. Typhimurium CCARM 8009을 효과적으로 저해하였다 (4 log reduction). 본 결과는 phage와 항생제의 조합처리는 항생제 내성균을 제어하기 위한 방법으로 충분히 응용가치가 높음을 보여주고 있다.

일부 대장균 균주는 독성을 가지고 있으며 이들을 제어 하기 위해 박테리오파지와 같은 대체 항균물질에 대한 연구가 활발히 진행되고 있다. 본 연구에서는 E. coli DH5α 균주를 모델로 이 균주의 생육을 억제하는 박테리오파지 ECP27과 병용처리했을 때 상승효과를 나타낼 수 있는 항균물질을 탐색하였다. 후보물질로는 CaCl2, 젖산, 구연산 이 사용되었다. CaCl2의 경우 6시간째 농도 의존적으로 생육억제 상승효과가 나타났으나 12시간째 E. coli DH5α의 생균수가 회복되는 추세를 보였다. 그러나 30mM 농도에 서 젖산과 구연산은 박테리오파지 ECP27과 병용처리 했을 때 E. coli DH5α의 생육저해에 대하여 6시간째 상승 효과를 보였으며 12시간째 생균수가 검출되지 않았다. 또한 젖산과 구연산을 단독으로 처리했을 때 12시간째 E. coli DH5α의 생균수가 확인되지 않아 독자적으로도 항균력이 우수하였다. 따라서 박테리오파지와 유기산을 병용 처리하는 것은 대장균의 생육을 효과적으로 억제하는 좋은 전략이 될 수 있을 것이다.

There has been an accelerating increase in water reuse due to growing world population, rapid urbanization, and increasing scarcity of water resources. However, it is well recognized that water reuse practice is associated with many human health and ecological risks due to numerous chemicals and pathogenic microorganisms. Especially, the potential transmission of infectious disease by hundreds of pathogenic viruses in wastewater is one of the most serious human health risks associated with water reuse. In this study, we determined the response of different bacteriophages representing various bacteriophage groups to chlorination in real wastewater in order to identify a more reliable bacteriophage indicator system for chlorination in wastewater. Different bacteriophages were spiked into secondary effluents from wastewater plants from three different geographic areas, and then subjected to various doses of free chlorine and contact time at 5˚C in a bench-scale batch disinfection system. The inactivation of φX174 was relatively rapid and reached ∼4 log10 with a CT value of 5 mg/L*min. On the other hand, the inactivation of bacteriophage PRD1 and MS2 were much slower than the one for φX174 and only ~1 log10 inactivation was achieved by a CT value of 10 mg/L*min. Overall, the results of this study suggest that bacteriophage both MS2 and PRD1 could be a reliable indicator for human pathogenic viruses for chlorination in wastewater treatment processes and water reuse practice.

The aim of study was to investigate the virulence profile of Escherichia coli O157:H7 bacteriophages isolated from sewage and livestock stools. Among 23 E. coli O157:H7 bacteriophages, 14 strains were isolated from sewage and 9 were from animal stools collected from 10 livestock farms in Korea. For each bacteriophage DNA sample, the presence of stx1, stx2, eae, aafII, ial, elt, estI, estII, astA, afa, and cnf was examined by polymerase chain reaction. The detection rate of eae, stx2, estI, astA, and ial was 100%, 69.6%, 13.0%, 13.0%, 8.7%, respectively. While all E. coli O157:H7 bacteriophages isolated from stools carried eae+stx2, stx2+eae, eae+astA, eae, stx2+eae+estI, eae+estI, stx2+eae+ial, and eae+ial were observed in bacteriophages isolated from sewage. As several plasmid-carrying virulence factors (estI, astA, and ial) were found in E. coli O157:H7 bacteriophages obtained from sewage and stools, the microbial safety of bacteriophages should be investigated in further study.

지금까지 보고된 probiotics로서의 유산균의 효과에 대해서는 임상 연구 등을 통해 많이 규명되었다. 앞으로 식품산업에서 유산균을 이용함에 있어 보다 효과적으로 사용하기 위해서는 유산균의 genome에 기반으로 해서 생리 특성, 항균효과, 발효 특성 등을 연구하는 것이 보다 효율적 일 것이다. 그리고, 이러한 유산균 발효에 있어 중요한 부분을 차지하는 bacteriophage에 대한 분자생물학적 특성에 대한 연구와 유산균과의 상관 관계, bacteriophage 내성 균주 개발 등에 대한 연구가 필요할 것이다. 하지만, 국외에서 다양한 유산균을 이용한 의약 분야, 식품 분야 등에서 연구가 활발하게 진행되고 있으나, 국내에서는 최근 들어 유산균 관련 연구가 상대적으로 주춤하고 있는 것으로 보여진다. 따라서, 국내외적으로 건강에 대한 관심이 높아지고 있는 지금 시점에서 보다 광범위한 유산균에 대한 연구가 진행되어야 할 것으로 판단된다.

Through an application of plasmid capture system (PCS) to Bacillus thuringiensis plasmid DNAs, we acquired 21 polymorphic clones of putative genomic DNA of bacteriophage. The genome size of phage 1-3 (PhBT1-3) was determined to be 46,517 base pairs (bp) with 35.43% G + C content and 83% coding region. Sixty-five putative open reading frames (ORFs) with more than 50 codons were found in the new phage genome. In accordance with this genome finding, the phage particles and its DNA were confirmed from the supernatant of B. thuringiensis 1-3. Morphological characterization and infectivity assay demonstrated that PhBT1-3 belongs to the family Siphoviridae and it showed infectivity to three B. thuringiensis type strains, galleriae, entomocidus, and morrisoni. Based on these results, we screened the existence of phages in B. thuringiensis type strains by PCR with terminase small subunit-specific primers. Ten of 67 type strains showed PCR products and the similarity of those putative amino acids was more than 70%. Furthermore, we verified the existence of various shaped phages from the supernatants of 10 B. thuringiensis type cultures. In conclusion, we characterized a putative genome of phage, PhBT1-3 from B. thuringiensis 1-3, and confirmed the distribution of phages in the group of 67 B. thuringiensis type strains.

1. 전국에서 채집 분리한 51개의 균주를 phage의 용 균형에 따라 분류하여 8가지 계통으로 나누었다. 2. 8가지 계통 중 F-계통이 우리나라에 가장 많았으며 H.C.A계통이 그 다음 순이었고 일본이나 남방계에 많은 D-계통은 발견되지 않았다. 3. 우리나라에 분포하고 있는 흰빛잎마름병균은 지역에 따라서 계통이 한정되거나 특이성을 보이지 않았다. 4. 통일품종은 단일품종내에서 6가지의 계통이 분리되었으나 다른 품종에서는 3가지 이내의 계통이 분리되었다.

본 병은 그 병징이 종래에 알려진 일반 묘썩음병과는 달리 검은빛 균사가 수중의 종자표면을 뒤덮어 자라면서 종자표면을 흑변시킬 뿐만 아니라, 종자의 주위토양까지도 흑변시켰으며, 발아한 종자는 최고 3cm 이상은 자라지도 못하고 흑변하여 부패하였다. 병원균은 자연상태에서나 인공배양기상에서나 포자를 형성하지 않았으며, 균사는 현미경하에서 암색을 띄었고 뚜렷한 격막을 갖고 있었다. 따라서 종래의 벼모썩음병 병원균의 대부분이 Phycomysetes에 속했으나 본병원균은 불완전균을 닮아 있었으며, 앞으로 그 구명을 위한 계속적인 연구가 필요했다. 본병의 발병환경은 모든 면에서 종래의 벼 모썩음병과 거의 동일했으며, 특히 종자가 발아할 때의 환경조건이 절대적인 영향을 미쳤다. 본병균은 종자를 통해서 전염되는 경우는 없었으며, 오직 감염된 토양에 의해서만 전염된다는 것을 알 수 있었다

Continuous outbreaks of Shigella spp. have raised concerns about the lack of rapid and on-site applicable biosensor method for Shigella detection. Since a bacteriophage has recently been employed as an emerging bio-recognition element in biosensor method, Shigella sonnei-specific bacteriophage was isolated and purified from a slaughterhouse with the final concentration of 2.0×1012 PFU/mL in this study. Analysis of purified S. sonnei-specific bacteriophage using transmission electron microscopy indicated that it possessed an icosahedral head with a relatively long non-contractile tail. It was therefore classified as a member of the Siphoviridae family. Head width, head length, and tail length were 69.9±11.2 nm, 77.5±8.8 nm, and 264.4±33.9 nm, respectively. The genomic DNA size of the S. sonnei-specific bacteriophage was determined to be approximately 25 kb by using 0.4% agarose gel electrophoresis. In specificity test with 43 food-associated microorganisms, the S. sonnei-specific bacteriophage exhibited a clear plaque against S. sonnei only. In addition, the S. sonnei-specific bacteriophage was stable within a wide range of pH values (pH 3-11) and temperatures (4-37 ). Thus, the present study demonstrated the excellent specificity and stability of the S. sonnei-specific bacteriophage as a novel bio-recognition element for S. sonnei detection in foods.

The bacteriophage from the fresh oyster, Crassostrea Vrginiea which is specific to the marine bacterium was isolated and characterized. Among the four different vibrio species and the five different serotypes of. Vibrio parahaemolyticus host strains tested, only two strains of Vibrio parahaemolyticus possessing K17, K52 antigens were highly sensitive to the phage. The size of the isolated plaque was 0.4㎜ and the electron microscopic head size of the isolated phage was about 67 nm long and 83 nm wide. PFU/㎖ was 1.25×10^11. The phage was sensitive to chloroform but resistant to acetone or methanol. The assay of the iseoted phage nucleic acid was deoxyribonucleic acid. The restriction enzyme pattern showed 14 fragments from Hind Ⅲ and 4 fragments from Eco R I. Two different antigenic groups showed similar restriction enzyme patterns.