본 연구에서는 토마토 유전자원 49점을 대상으로 엽록소형 광 측정 프로토콜인 Quenching act 2를 이용하여 염류 스트레스 수준을 구분할 수 있는 엽록소형광 매개변수를 선발하기 위해 수행되었다. 염류 스트레스 평가는 3엽기 유묘 단계의 토마토 유전자원 49점을 대상으로, 1일 1회 NaCl 400mM로 저면관수를 처리하였다. 염류 스트레스 처리 4일차에 토마토 유묘의 지상부 생체중, 엽록소 및 프롤린 함량 분석을 실시하였 다. 토마토 유전자원 49점의 지상부 생체중 및 엽록소 함량은 대부분 감소하였으며, 프롤린 함량 증가율은 유전자원 별로 유사하였다. 대표적인 12개의 엽록소형광 매개변수는 염류 스트레스에 노출되는 기간이 길어질수록 증감하는 경향을 보였으며, 염류 스트레스에 노출될수록 Y(NO)는 증가하였다. 본 연구결과에서 유전자원 49점의 광계Ⅱ의 비조절 에너지 소산의 양자 수율[Y(NO)]은 염류 스트레스 하에 차이를 보였으 며, 염류 스트레스에 저항성을 지닌 염류 저항성 유전자원과 염류 스트레스에 감수성 유전자원 간의 차이를 확인할 수 있는 엽록소형광 매개변수로 판단되며, 토마토 유전자원에 대해 염류 스트레스 수준을 평가할 수 있는 보완적인 도구로 활용 가능하다고 판단된다.

To evaluate the possibility of a non-destructive diagnosis of salinity stress in the tomato genetic resources using chlorophyll fluorescence (CF) imaging technique, 49 tomato genetic resources at 3-leaf stages were used in this study. The seedlings were irrigated once a day with tap water and 400 mM NaCl for control and salinity stress treatment, respectively and the CF parameters were assessed during four days of the experimental period. The shoots were collected and used for the measurement of growth parameters, chlorophyll and proline contents at the end of the treatment. The chlorophyll content (a and b) and fresh weight showed differential changes (%) among the susceptible, moderately resistant, and resistant genetic resources, while changes in the proline content were similar in all the genetic resources. All the CF parameters showed a positive or negative response to the salinity stress in which the quantum yield of non-regulated energy dissipation in PSII [Y(NO)] continuously increased regardless of the treatment time in the resistant, moderately resistant and susceptible genetic resources. Y(NO) was used for the screening of the 49 genetic resources and the result showed that the clear differences in Y(NO) among the susceptible, moderately resistant, and resistant genetic resources. It is concluded that the Y(NO) can be used as a CF parameter index for the screening of salinity stress tolerance in tomato genetic resources.

Abstract.
서 론
재료 및 방법
    1. 실험재료 및 재배 환경조건
    2. 염류 스트레스 처리 방법
    3. 엽록소형광 측정
    4. 지상부 생체중 조사
    5. 엽록소 함량 분석
    6. 프롤린 함량 분석
    7. 통계 분석
결과 및 고찰
    1. 염류 스트레스에 따른 유전자원의 생체중, 엽록소 및프롤린 분석
    2. 염류 스트레스에 따른 유전자원 별 엽록소형광 매개변수 변화
적 요
Literature Cited

• 신유경(전북대학교 농업생명과학대학 원예학과) | Yu Kyeong Shin (Department of Horticulture, College of Agriculture & Life Sciences, Jeonbuk National University)
• 조정수(전북대학교 농업생명과학대학 원예학과) | Jung Su Jo (Department of Horticulture, College of Agriculture & Life Sciences, Jeonbuk National University)
• 조명철(농촌진흥청 국립원예특작과학원 채소과) | Myeong-Cheoul Cho (Vegetable Research Division, National Institute of Horticultural & Herbal Science, RDA)
• 양은영(농촌진흥청 국립원예특작과학원 채소과) | Eun-Young Yang (Vegetable Research Division, National Institute of Horticultural & Herbal Science, RDA)
• 안율균(국립한국농수산대학) | Yul Kyun Ahn (Department of vegetable crops, Korea National College of Agriculture and Fisheries)
• 황인덕(㈜부농종묘 육종연구소) | In deok Hwang (R&D Center, Bunong seed Co.)
• 이준구(전북대학교 농업생명과학대학 원예학과/전북대학교 농업과학기술연구소/전북대학교 부설 지능형로봇연구소) | Jun Gu Lee (Department of Horticulture, College of Agriculture & Life Sciences, Jeonbuk National University/Korea Institute of Agricultural Science & Technology, Jeonbuk National University/Core Research Institute of Intelligent Robots, Jeonbuk National University) Corresponding author