레드 클로-버의 액체배양세포로부터 내산성 세포선발에 대한 몇가지 요인들의 영향을 규명하기 위한 실험으로 부터 다음과 같은 결과들을 얻었다. 액체배양세포의 유도에는 auxin원으로 2,4-D 2 mg/l와 cytokinin으로 BAP 0.5 mg/l를 혼합처리한 것이 가장 좋았으며, 여러가지 기본배지중 PC배지가 액체배양세포의 유도에 가장 효과적이었다. 내산성 세포를 선발하기 위하여 EMS를 여러가지 농도에서 4시간 처리했을 때, 가장 효율적인 EMS농도

Background : Even though Kalopanax septemlobus has been used as a traditional crude drug and a dietary health supplement, the wild or cultivated sources of this plant are not economically feasible. Methods and Results : In this study, a cell suspension culture of K. septemlobus using friable calli was established to make source sustainable. A cell suspension culture of K. septemlobus was incubated during 15th day and reached the maximum capacity of saponin production after day 6 (0.42㎍/㎎ of fresh weight). To investigate the effect of elicitors on the product yield of saponins in the K. septemlobus suspension culture, we treated methyl-jasmonic acid and coronatine (COR), which are known as signal molecules. COR positively regulates the total saponin production in the cell suspension of K. septemlobus at a concentration of 1 μM compared with the mock-treated control. Furthermore, the expression of beta-amyrin synthase (KsbAS) was induced by elicitation of COR. Consequently, oleanane-type triterpene saponins, oleanolic acid (2.369 ± 0.98 ㎍/㎎ of extract) were accumulated by only COR. Conclusion : From the above results, COR is an efficient elicitor for inducing saponin biosynthesis in a K. septemlobus suspension culture. Gene expression pattern and analysing precursor of triterpenoid saponin indicate that major target gene of COR in K. septemlobus suspension culture is KsbAS.

참돌꽃의 캘러스는 0.5 mg/l NAA와 1 mg/l BA가 조합 첨가된 1/2MS 배지에서 유도하였으며, 현탁세포배양은 0.5 mg/l NAA와 1 mg/l BA가 조합 첨가된 2B5 배지에서 확립되었다. 한편, 참돌꽃 뿌리로부터 반복된 silicagel colum chromatography와 분취 HPLC를 통하여 순수한 salidroside 결정을 얻었으며, 얻어진 결정체는 1H-NMR, 13C-NMR 및 1H-1H COSY 등의 분광학적 분석으로 구조를 동정 확인하였다. 확립된 세포배양계에서 salidroside 함량은 원뿌리 0.17%에 비교하여 광배양(0.12%) 암배양 (0.286%) 및 sucrose 5%에서 함량이 0.41% 까지의 함량변화를 나타내었다.

본 실험은 쪽 세포의 현탁배양에서 indirubin 생산을 위한 indole의 처리 시기와 처리 기간 및 첨가량을 찾기 위하여 수행하였으며 얻어진 결과는 다음과 같다. 1. Indole 첨가시 세포 생장량은 억제되었다. 2. Tryptophan 첨가시 세포 생장량의 증가는 크지 않았다. 3. Indole과 L-tryptophan을 고체레지에 첨가한 경우 indole을 첨가한 배지에서 만 indirubin이 검출되었다. 4. Indirubin 생산에 적절한 indole 첨가 농도는 고체배지에서 200mg으로 나타났다. 5. 현탁배양 중 indole 첨가시기를 달리한 결과 배양 20일 후 indole을 첨가한 배지에서 세포와 배지내 indirubin 농도가 높았다. 6. 고체배양보다 현탁배양에서 세포내에 축적된indirubin이 많았으며 배지 내 로 상당량의 indirubin이 유출되었다.