박테리오신은 다양한 식품에서 천연 보존제로 그리고 항생제 대체제로 잠재력을 가지고 있다. 그러나 박테리오신의 다단계 정제 공정은 높은 생산 비용을 야기하여 상업적 이용 등 소비자 접근성에 장애요인이 되고있다. 식품 등 일부 산업 분야에서 활용하기 위한 박테리오신의 순도는 그리 높지 않아도 되며, 이에 따라 정제 공정을 간소화하여 생산 비용을 낮추고 공정 효율성을 강화할 수 있다. 이러한 관점에서 박테리오신 등에 적용할 수 있는 수성- 이상계 시스템(ATPS)은 높은 정제 수율과 빠른 처리 시간으로 인해 산업분야에서 하부 공정 처리 기술로 적절한 대안이 될 수 있으며, 고분자 수용액이 70~90% 물로 이루어진 친환경적 기술로서 환경보호에도 도움을 줄 것으로 전망된다.

미꾸라지에서의 Nitrofuran계 대사물질인3-amino-2-oxazolidone (AOZ), 5-morpholinomethyl-3-amino-2-oxazolidinone (AMOZ), 1-ammino-hydantoin (AHD)와 semicarbazide (SEM)의 잔류량을 검사하기 위해HPLC-MS/MS를 이용한 신속한 정량법이 개발되었다. 2-nitrobenzaldehyde (2-NBA)를 이용해 50℃에서 1시간 동안 산 가수분해와 유도체화 과정을 거친 뒤에, 액-액 분배로 정제와 추출을 하였다. 회수율은 음성시료에 3가지 농도 0.5, 1.0, 2.0 μg/kg의 표준액을 첨가하여 평가하였고 평균 회수율은 75.1-108.1% 이었다. 정밀성(%RSD)은 일내 8.7% 이하, 일간 8.5% 이하였다. 직선성은 NBAOZ는 0.2-20 μg/Kg, NBAMOZ는 0.8-20 μg/Kg, NBAHD는 0.2-20 μg/Kg, NBSEM 는 0.1-20 μg/Kg 범위에서 모두 상관계수 0.99이상이었다. 검출한계(LOD)는 NBAOZ 0.06 μg/Kg, NBAMOZ 0.24 μg/Kg, NBAHD 0.06 μg/Kg, NBSEM 0.03 μg/Kg이었고, 정량한계(LOQ)는 NBAOZ 0.2 μg/Kg, NBAMOZ 0.8 μg/Kg, NBAHD 0.2 μg/Kg, NBSEM 0.1 μg/Kg 이었다. 가수분해 및 유도체화 소요시간을 1시간으로 줄여 만든 신속 간편한 이 시험법이미꾸라지 중 nitrofuran metabolites잔류량 분석에 적합함을 확인할 수 있었다.

A rapid and simple method for the quantitative determination of volatile fatty acids (VFAs; propionic acid, n-butyric acid, i-valeric acid and n-valeric acid) and indoles (phenol, p-cresol, 4-ethyl phenol, indole and skatole) in pig slurry and dog excrement using solid-phase micro-extraction (SPME) coupled to gas chromatography was evaluated. 50/30 ㎛ DVB/CAR/PDMS (Divinylbenzene/Carboxen/Polydimethylsiloxane) fiber was used to extract the target compounds in aqueous media. Sample amount and adsorption time was standardized for the routine analysis. Detection limits were from 0.11 to 0.15 ㎍/L for VFAs and from 0.12 to 0.28 ㎍/L for indoles and the correlations observed (R2) were 0.975～1.000. This method was applied to the pig slurry, fertilizer, compost and dog excrement. In nearly all cases, the indoles were detected in concentrations of higher than their limits of detection (DOLs). But the VFAs in swine manure were below their DOLs.

Polymerase chain reaction (PCR) is highly utilized for QTL analysis, positional cloning of valuable genes, and molecular breeding in crop science. Usually those experiments handle DNA samples of many genotypes (up to several thousands). However, many DNA extraction protocols require longer time using harmful chemicals such as chloroform, phenol, and liquid nitrogen. Here, we introduce a new DNA extraction method for PCR with agarose/PAGE analysis from a diversity panel of rice genotypes identified with yield enhancing traits. This protocol consists of four steps including injection of extraction buffer (20 mM Tris-HCl pH9.5, 200 mM KCl, 2 mM EDTA) into the tubes containing leaf tissues and steel balls, and crushing tissues using Geno-Grinder without liquid nitrogen, sample incubation at 65°C, and then centrifugation for removing cell debris. After centrifugation the crude extracts directly used as template DNA for PCR. Through this protocol we could complete F1 hybridity test from approximately 2,100 plants that come from 96 cross combinations with 13 SSR markers. In addition, we tested the DNA quality by PCR amplification of high GC-rich region and large target size (-2kb). From these results our DNA extraction method produces enough DNA quality for PCR and is suitable for large scale molecular analysis from rice plants.