This study investigated the use of bovine serum albumin (BSA) as alternatives to fetal bovine serum (FBS) in in vitro maturation medium. The oocyte maturation, cumulus cell-oocyte gap junctional communication, and development of bovine embryos were determined by assessing their cell number, lipid content, mitochondrial activity, gene expression and cryo-tolerance. Oocytes were cultured in TCM-199 supplemented with 1 μg/ml estradiol-17ß, 10 μg/ml FSH, 10 ng/ml EGF, 0.6 mM cysteine, 0.2 mM sodium pyruvate and either 8% BSA (BSA group), 10% FBS (FBS group), or neither BSA nor FBS (TCM group), and followed by in vitro fertilization and the zygotes were cultured in SOF-BE1 medium. The differences in embryo development between experimental groups were analyzed by one-way ANOVA. We have shown that the percentages of embryos that underwent cleavage and formed a blastocyst were non significantly different among all experimental groups (37.4 ± 1.5% for FBS group vs. 31.1 ± 3.9% for BSA group and 34.5 ± 1.6% for TCM group, six replicates were performed). Furthermore, there was no significant difference between the percentage of MII oocyte between FBS (71.8 ± 1.9%) and BSA groups (69.3 ± 2.3%). However, culture of oocytes with FBS increased (P < 0.05) the cumulus cell expansion as well as expression of gape junction proteins, CX37 and CX43, at both transcriptional and translation levels. We also found that FBS significantly increased total cell number and decreased the apoptotic index in day-8 blastocyst comparing to BSA group. The beneficial effects of BSA on embryos were associated with significantly reduced intracellular lipid content and increased mitochondrial activity in both oocytes and blastocyst. Taken together, these data suggest that supplementation of maturation medium with BSA, as alternatives to FBS, can be used as defined medium that support consistently the development of IVP bovine embryos.

Allicin (AL) regulates the cellular redox, proliferation, viability, and cell cycle of different cells against extracellular-derived stress. This study was to investigate the effect of allicin treatment during in vitro maturation (IVM) on porcine oocyte maturation and developmental competence. Porcine follicular oocytes were cultured in 0 (control), 0.01, 0.1, 1, 10, and 100 μM AL added IVM media. The rate of polar body emission was higher in the 0.1 μM AL-treated group (74.5% ± 2.3%) than in the control (68.0% ± 2.6%). After parthenogenetic activation, the rates of cleavage and blastocyst formation were significantly higher in the 0.1 μM AL-treated group than in the control (p < 0.05). The reactive oxygen species level at metaphase II was not significantly different among all groups. In matured oocytes, the relative mRNA expression of both BAK and CASP3, and BIRC5 were significantly lower and higher, respectively, in the 0.1 AL-treated group than in the control. Also, the mRNA expression of BMP15 and cyclin B, and the activity of phospho-p44/42 MAPK, was significantly increased. These results indicate that supplementation of oocyte maturation medium with allicin during IVM improves the maturation of oocytes and the subsequent developmental competence of porcine oocytes.

These study was carried out to investigate the effects of the collection time, culture time and activation of canine oocytes on in vitro maturation rates. The activated oocytes were cultured in 10% FCS+TCM-199 media containing hormonal supplements (10 IU/ml HCG, 10 IU/ml PMSG, 10 ug/ml gonadotropin) at 5% , 95% air, . 1. IVM rate of in vitro cultured cumulus-attached oocytes recovered from ovaries that collected at follicular and luteal stages of the reproductive cycles were 11.4% and 5.7%, respectively. IVM rate of oocytes recovered from ovaries that collected at follicular stages of the reproductive cycles was significantly higher than that of luteal stage (p<0.05). 2. When IVM was carried out at different periods of 40, 48, and 70 hrs, the IVM rates of oocytes matured in vitro were 2.9%, 8.6%, 5.7%, respectively. These results indicate that the IVM time between hrs gives the highest maturation rate for the oocytes matured at the different stages. 3. IVM rate of oocytes matured in vitro for 10 hrs after single and combined activation treatment by ET, IP and CH and Ca+DMAP, CH+DMAP, ET+CH were respectively. This was higher than that in both single and combined stimulated groups compared to control group ().

본 연구는 안정된 돼지 체외 성숙 난자를 얻을 목적으로 배양액의 종류 및 배양액에 EGF, , 호르몬 첨가가 돼지 난포란의 체외 성숙에 미치는 영향을 조사하였다. 난포란을 TCM-199, NCSU-23 및 PZM-3으로 48시간 배양했을 때 체외 성숙율은 각각 및 였다. TCM-199로 48시간 배양했을 때 체외 성숙율은 NCSU-23 및 PZM-3 보다 약간 낮은 체외 발생율을 나타냈다. 난포란을 25 ng/ml의 EGF를 첨가한 TCM-199, NC

본 연구는 고급육을 생산한 한우의 유전자를 재활용하기 위해 기초 등록우와 혈통 등록우의 육질등급이 1 등급 이상인 암소의 난소에서 개체별로 채취한 난포란을 개체별로 각각 체외 성숙, 체외 수정 및 체외 배양하였다. 그 결과를 요약하면 다음과 같다. 기초 등록우의 육질 등급별로 회수된 난포란은 각각 1 등급 평균 28.9개, 등급 평균 28.8개, 등급 29.6개로 평균 29.0개였다. 기초 등록우의 육질 등급별 배반포배 형성율은 각각 1 등급 27.2%

본 연구는 개 체외성숙 난자를 안정적으로 생산하기 위하여 채취시기, 난구세포 부착 여부 및 배양액에 EGF와 호르몬을 첨가 후 배양했을 때 체외성숙율에 미치는 영향을 조사하였다. 1. 미성숙 난포란을 TCM-199 배양액에서 24, 45시간 배양했을 때 체외성숙율은 각각 7.93%, 8.94%로서 48시간 배양했을 때 가장 높은 체외성숙율을 나타냈다. 2. 휴지기, 난포기, 황체기에 채취한 난소로부터 회수한 난자를 20 ng/ml의 EGF가 첨가된 TC

개 난자의 체외성숙과 체외수정을 통해 수정란을 획득하기 위하여 개 난소를 채취하여 난자의 형태, 난소의 채취시기 등이 체외성숙과 체외수정에 미치는 영향을 구명하기 위하여 수행하였다. 1. 난구세포 부착 및 미부착 난자를 48시간 배양했을 때 체외 성숙율은 였다. 난구 세포 부착 난자의 체외 성숙율이 미부착 난자의 체외 성숙율보다 유의하게 높게 나타났다(p>0.05). 2. 난소를 휴지기, 난포기 및 황체기로 구분하여 난자를 회수하여 배양했을 때 체외 성

1. The concentrations of Ang. II were 7.20.91 × 10³, 3.80.34 × 10³, 3.50.30 × 10³, 2.80.22 × 10³ pg/ml in bovine follicular fluids from 1∼3 mm, 3∼5 mm, 5∼7 mm and 8∼10 m follicles, respectively. The concentrations of Ang. II decreased in follicular fluids from large follicles. 2. When oocytes were cultured in media containing various concentrations of Ang. II, a higher proportion of oocytes developed to MII stage in medium with 100 ng/ml (79.5%) Ang II compare to that without Ang. II (58.8%). When oocytes from different sizes of follicles were separately cultured in media containing 100 ng/ml Ang. II, maturation rates were higher in oocytes from small and medium follicles those from controls. 3. GSH content in oocytes cultured for 24 hrs in TCM-199 medium containing 10 and 100 ng/ml of Ang. II was also higher than that of oocytes cultured in medium containing 0 or 10 ng/ml Ang. II. When oocytes were cultured in media containing 0, 10, 100, 1,000 ng/ml of Ang. II, the concentrations of GSH were 5.1M, 5.5M, 7.2M, 8.7M, respectively. 4. When oocytes were cultured in media containing various concentrations of 10, 100, 1,000 ng/ml Ang. II, in vitro maturation and developmental rates were 84.0%, 90.0%, 78.0% and 28.0%, 36.0%, 20.0%, respectively. When oocytes were cultured with an addition of Ang. II in media, in vitro maturation rates higher than that of their controls (76.0%).

본 연구는 미성숙 돼지난자가 체외성숙배양액인 TCM-199과 NCSU-23배지에서의 배양상태를 비교하였고, 체외성숙용 TCM-199배지에 Earle'ssalt와 Hank's salt의 첨가에 의한 세포분화와 배발달 상태를 각각 조사하였다. 1. TCM-199와 NCSU-23 배양액에 각각의 supplement를 첨가하여 5% 조건하에서 체외성숙을 유기한 결과, TCM-199 배양액에서 유의성(p<0.05)이 검증되었다. 2. 체외성숙용 TCM-199배지

본 연구는 돼지 난포란의 체외배양액에 황화합물인 β-mercaptoethanol(β-ME)을 첨가배양함으로서 돼지난포란의 체외성숙과 체외배발달에 미치는 향을 구명하고자 실시하였다. 본 연구에서 얻어진 결과를 요약하면 다음과 같다. 1. 돼지난포란을 체외성숙배양액인 NCSU-23 배양액에 β-ME를 각각 0, 25, 50 및 100μM 첨가배양하여 성숙을 유기한 다음, 체외수정을 실시한 결과, 모든 처리구에서 핵성숙률, 정자침투율, 웅성전핵형성률, 다정자침입률 및 평균침입정 수에서 유의적인 차이가 인정되지 않았다 P>0.05). 2. 체외성숙 및 수정을 실시한 후, 배발달 배양액인 NCSU-23에 7일간 배양한 결과, 배반포 형성률은 25μM의 β-ME 처리구가 유의적(P<0.05)으로 높은 결과를 나타냈고, 총세포수에 있어서는 대조구와 처리구간 유의적인 차이가 인정되지 않았다. 3. 배발달배양액인 NCSU-23에 β-ME를 각각 0, 12.5, 25 및 5μM 첨가하고 5 및 20%산소조건 하에서 7일간 배양한 결과, 처리구별 산소농도에 따른 배발달률 및 총세포수에 있어서는 유의 적 인 차이가 없었으나, 25μM β-ME 처리구에서 유의적으로 높은 결과를 나타냈다(P<0.05). 그러나 총세포수에서는 처리구 및 대조구간 유의성이 인정되지 않았다. 결론적으로 돼지난포란의 체외성숙 및 배발달시 황화합물인 β-ME의 첨가는 25μM이 가장 적합하며, 산소농도에 따라서는 영향을 미치지 않는 것으로 조사되었다.

본 연구는 돼지난포란의 체외배양액에 황화합물인 Catalase 첨가 및 저분압산소조건 하에서 첨가배양함으로서 돼지난포란의 체외성숙과 체외배발달에 미치는 영향을 구명하고자 실시하였다. 본 연구에서 얻어진 결과를 요약하면 다음과 같다. 1. 돼지난포란을 체외성숙배양액인 0.9mM cy-steine이 함유된 NCSU-23 배양액에 CAT를 각각 0, 100, 500 및 1000uni1s/m1 첨가하여 체외성숙 및 수정을 실시한 결과, 모든 평가요소에서 처리구가 대조구에 비하여 유의적으로 낮은 결과를 나타내어 체외수정에 좋지 않은 영향을 미치는 것으로 판단된다(P>0.05). 2. 체외수정을 실시한 후, 배발달배양액인 NCSU-23에 7일 동안 배양한 결과, 배반포형성률과 총세포수에 있어서 처리구가 대조구에 비하여 유의적으로 낮은 결과를 나타내어 체외성숙시 CAT 첨가배양은 배발달에 좋지 않은 것으로 판단된 다(P>0.05). 3. 배발달배양액인 NCSU-23에 CAT를 각각 0, 100, 500 및 1000units/m1을 첨가하고 5 및 20% 산소농도하에서 7일간 배양을 실시한 결과, 산소농도에 따른 차이는 인정되지 않았으며, CAT 첨가에 따른 배반포형성률과 총세포수에 있어서도 처리구가 대조구보다 유의적으로 낮은 결과를 나타냈다(P>0.05). 결론적으로 돼지난포란을 이용하여 체외수정란을 생산할 때, NCSU-23 배양액에 catalase의 첨가 및 산소조건은 영향을 미치지 않는 것으로 조사되었다.

성숙배양액과 단백질이 개 미성숙난자의 체외성숙에 미치는 영향