본 연구는 핵산가수분해 기능이 있는 항체인 3D8 scFv(single-chain variable fragment) 유전자를 형질전환 닭에서 발현시키고 3D8 scFv 항체의 항-바이러스 기능을 검증하고자 한다. 연구는 in vitro(형질전환 닭유래 세포)와 in vivo(형질전환 닭)로 나누어서 수행하고자 한다. 먼저 닭 태아섬유아세포는 형질전환 닭과 일반 닭을 각각 인공수정을 시킨 후 생산된 10일차 수정란의 태아에서 CEF(Chicken Embryo Fibroblast)를 수집하였다. 3D8 scFv 유전 자가 삽입된 CEF 세포는 항생제(puromycin)를 이용하여 형질전환 세포만을 선발하였다. 그 리고 선발된 CEF 세포는 면역염색을 이용하여 3D8 scFv 유전자가 세포내에서 단백질로 발현됨을 확인하였다. 그리고 선발된 세포들의 항-바이러스 기능 검증은 GFP 유전자로 표 지된 재조합 NDV(Newcastle Disease Virus)를 세포에 직접 감염시키고, 세포내에서 발현 하 는 GFP의 발현량을 FACS를 이용하여 정량하는 방법으로 항-바이러스 기능을 조사하였다. 이들 가운데 항-바이러스 기능이 있을 것으로 예상되는 형질전환 2계통에 대하여 항-바이러스 기능을 검증을 준비하고 있다.

Pronuclear DNA microinjection has been the most universal method in transgenic animal production but its success rate of transgenesis in mammals are extremely low. To address this long-standing problem, we used retrovirus- and lentivirus-based vectors carrying the enhanced green fluorescent protein (EGFP) gene under the control of ubiquitously active cytomegalovirus (CMV) promoter to deliver transgenes to bovine embryos. The rate of transgenesis was evaluated by counting EGFP positive blastocysts after injection of concentrated virus stock into the perivitelline space of the bovine oocytes in metaphase II. Among two different types of lentivirus vectors derived from FIV (feline immunodeficiency virus) and HIV (human immunodeficiency virus), the former scored the higher gene transfer efficiency; almost 100% of the blastocysts developed from the oocytes infected with FIV-based vector were EGFP positive. As for the vectors derived Com HIV lentivirus, the transgenesis rate of the blastocysts was reduced to 39%.