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        검색결과 137

        121.
        2006.08 KCI 등재 서비스 종료(열람 제한)
        기린초의 토양 pH별 생육특성을 보면 pH가 낮을수록 생육초기부터 후기까지 초장, 엽수, 분지수 등의 생육이 좋았으며 특히 초장과 분지수에서는 pH처리에 따라 통계적인 유의성이 인정되었다. 따라서 기린초 재배시에는 토양 pH를 4.5~5.0정도로 맞추어 주는 것이 pH 6.0보다 초기 활착이 빠르고 생육이 양호하며 균일성이 높아지는 것으로 나타났다.
        122.
        2006.02 KCI 등재 서비스 종료(열람 제한)
        앵초, 설앵초와 애기나리를 인위적으로 저온 처리하여 조기에 휴면 타파시켜 동계 생산에 필요한 저온요구시간을 구명하고자 저온시간을 각각 300, 500, 700, 900시간으로 처리하여 수행한 결과 앵초는 700시간이상, 설앵초와 애기나리는 모두 500시간 이상 저온(5℃)을 받으면 화경장이 신장되고 개화율도 높아지는 것으로 보아 휴면이 완전히 타파된 것으로 판단되었다. 따라서 앵초, 설앵초와 애기나리의 동계생산을 위해서는 5℃의 저온에 500~700시간 이상을 두었다가 온실로 옮겨 재배하면 2월 상순에 분화상품 생산이 가능할 것으로 생각된다.
        123.
        2004.06 KCI 등재 서비스 종료(열람 제한)
        참돌꽃의 캘러스는 0.5 mg/l NAA와 1 mg/l BA가 조합 첨가된 1/2MS 배지에서 유도하였으며, 현탁세포배양은 0.5 mg/l NAA와 1 mg/l BA가 조합 첨가된 2B5 배지에서 확립되었다. 한편, 참돌꽃 뿌리로부터 반복된 silicagel colum chromatography와 분취 HPLC를 통하여 순수한 salidroside 결정을 얻었으며, 얻어진 결정체는 1H-NMR, 13C-NMR 및 1H-1H COSY 등의 분광학적 분석으로 구조를 동정 확인하였다. 확립된 세포배양계에서 salidroside 함량은 원뿌리 0.17%에 비교하여 광배양(0.12%) 암배양 (0.286%) 및 sucrose 5%에서 함량이 0.41% 까지의 함량변화를 나타내었다.
        125.
        2003.03 KCI 등재 서비스 종료(열람 제한)
        Sheet형 전파흡수체를 제조하고 그들의 전자파 흡수 특성을 조사하였다. 제조된 ferrite 흡수체의 흡수특성은 2.4~3.2GHz의 주파수범위에서 입자크기의 감소에 따라 개선되었다.
        126.
        2002.12 KCI 등재 서비스 종료(열람 제한)
        5월부터 10월까지 병풀의 지상부에 triterpene glycosides인 madecassoside와 asiaticoside의 시기별 함량변화를 조사하였다. 잎에서는 9월에 약 108.1 mg/g으로 가장 높은 수준의 함량을 보였다. 엽병에서는 19.02 mg/g으로 잎에서 보이는 수준보다는 낮은 수준을 나타냈다. 병풀의 triterpene glycosides는 잎에 주로 축적되며, 가장 적절한 병풀의 수확시기는 9월로 잠적 확인되었다.
        137.
        1993.12 KCI 등재 서비스 종료(열람 제한)
        Optimal biodegradation kinetics models to the initial nonylphenol ethoxylates-30 concentration were investigated and had been fitted by the linear regression. Microorganisms capable of degrading nonylphenol ethoxylates-30 were isolated from sewage near Ulsan plant area by enrichment culture technique. Among them, the strain designated as EL-10K had the highest biodegradability and was identified as Pseudomonas from results of taxonomical studies. The optimal conditions for the biodegradation were 1.0 g/l of nonylphenol ethoxylates-30 and 0.02 g/l of ammonium nitrate at pH 7.0 and 30℃. The highest degradation rate of nonylphenol ethoxylates-30 was about 89% for 30 hours incubation on the optimal condition. Biodegradation date were fit by linear regression to equations for 3 kinetic models. The kinetics of biodegradation of nonylphenol ethoxylates was best described by first order model for 0.1 ㎍/l nonylphenol ethoxylates-30 ; by Monod no growth model and Monod with growth model for 0.5 ㎍/ml and 1.0, 5.0 ㎍/ml, respectively.
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