본 연구는 체외성숙 배지에 첨가하는 PVP의 농도, EGF, cysteine 및 PVP의 단독 또는 혼합첨가가 한우 체외수정란의 체외발생에 미치는 영향을 검토하였다. 체외성숙 배지에 PVP의 첨가농도(0.1~3.0%)에 따른 분할율은 차이가 없었으나, 배반포 발달율은 0.5% PVP 첨가군이 가장 높았다(P<0.05). PVP, EGF 및 cysteine의 단독 및 혼합 첨가에 따른 분할율은 cysteine 단독첨가군이 높았으나(P<0.05), 배반포 발달율은 차이가 없었다. Inner cell mass 수는 대조군과 cysteine 첨가군이 PVP 첨가군에 비하여 유의하게 높았고(P<0.05), 총 세포수도 cysteine 첨가군에서 가장 높았다. 수정란이식 결과는 대조군, EGF, cysteine 및 EGF+cysteine 군의 임신율은 46.1~63.6%로서 비슷하였으나, PVP 첨가군은 10%로서 다른 군에 비하여 유의하게 낮았다(P<0.05). 본 연구 결과는 체외성숙 배지에 PVP의 첨가로 배 발생은 가능하지만, 세포의 품질에는 악영향을 미치는 것을 보여준다.

In the present study, performances of several in vitro maturation (IVM) systems for porcine follicular oocytes were evaluated, and an efficient chemically defined IVM system for porcine oocytes was proposed. The proposed one-step culture system supplemented with polyvinylalcohol (PVA) gave competitive efficiencies in terms of oocyte maturation and blastocyst development after parthenogenetic activation and in vitro culture, compared with the conventional two-step culture system by a supplementation of porcine follicular fluid (pFF). Additionally, it is identified that the proposed chemically defined one-step culture system yielded the comparable level of blastocyst production to the conventional maturation system in porcine somatic cell nuclear transfer (SCNT). Therefore, one can eliminate un-expected effects accompanied by supplementation of pFF. No medium replacement during whole maturation period is an additional benefit by applying this new system. Thus, these data support that the developed PVA supplemented chemically defined one-step IVM system for porcine follicular oocyte might be used in porcine SCNT program.

This experiment was to investigate whether the mitochondria function assessment can be used for the prediction of sperm fertility through examining the correlation between mitochondria fluoromicroscopic frequency of frozen-thawed eight Hanwoo bull semen using rhodamine123 (R123) and in vitro embryo development following fertilization. Individual sperm were stained in 5ug/mL R123-added calcium-free Sp-TALP for 30 min at 0 h, 6 h, 12 h and 24 h after thawing and examined their mid-piece under an epifluorescence microscope using 495 nm excitation filter (x1,000). Three replications were taken, and at least 300 sperm per individual were examined. When semen samples were separated into two groups (good and poor) by sperm motility and fluorescent frequencies at just after thawing, average fluorescent frequencies were remarkably reduced as time going (0 h; 53.29~72.94%, 6 h; 21.40~58.90%, 12 h; 8.26~25.93%, 24 h; 1.00~13.78%, irrespective of selected group, and there were no differences at 6 h or 12 h after thawing between selected groups but indicated significant difference at 24 h after thawing (p<0.05). In vitro fertilization rates in good and poor groups ranging 70.8~77.8% and 52.1~84.5%, respectively, were not significantly different. However, in vitro development rates of the same groups ranging 25.7~40.0% and 12.9~1.8%, respectively, were significant different (p<0.05). These results demonstrate that mitochondria fluoromicroscopic assessment of frozen-thawed bovine sperm may be used as a criterion to select more fertile sperm.

본 연구는 아미노산의 첨가가 돼지 수정란의 체외 발달율에 미치는 영향을 구명하고자 PEF가 함유된 NCSU-23을 기본배지로 체외성숙 및 체외배양액을 조성한 후 EA(Essential amino acid), NA(Non-essential amino acid) 및 EANA(EA+ NA)를 첨가하여 체외성숙, 체외수정 및 체외발달에 미치는 영향을 조사하였다. 체외성숙 배지에 아미노산을 첨가한 결과 MH 단계까지의 체외성숙율은 NA 첨가군이 83.3%로 대조구 70.0%에 비하여 유의적으로(p<0.05) 높았다. 그러나 체외 수정 이후의 배 발달율과 수정율에서는 아미노산 첨가군과 무첨가군 사이에 유의적인 차이는 없었다. 체외배양액에 아미노산을 첨가한 후 배반포의 내부세포괴(ICM) 세포와 영양배엽(TE) 세포의 발달에 미치는 영향을 조사한 결과, ICM에서는 유의차를 발견할 수 없었으나 TE 세포는 EANA 처리구가 18.0±0.5개로 대조구 16.09±0.56개에 비해 유의적(p<0.05)으로 많았다. 총세포수에서도 EANA 처리구가 50.0±1.0개로 대조구 44.2±1.1개보다 유의적(p<0.05)으로 많았다. 이상의 결과를 종합할 때, 돼지의 체외수정란 생상에 있어서 아미노산의 첨가는 배반포로의 발달율에는 영향을 미치지 못하였으나 체외성숙율을 높이고 배반포의 세포수 향상에 도움을 주는 것으로 판단된다. 특히, 영양배엽(W) 세포의 발달율이 높은 것으로 보아 아미노산의 첨가는 돼지수정란의 착상에 도움을 줄 것이라 기대된다.

본 연구에서는 배양 체계(혈청 첨가 TCM199, TALP, CRlaa 및 혈청 미첨가; IVMD101, IVF100, IVMD101)가 체외수정 또는 미세주입된 수정란의 체외 발달에 미치는 효과를 검토하였다. 또한 미세주입에 사용하는 GFP유전자의 양 및 미세주입 수정란에서 형광발현 양상을 검토하였다. 체외수정된 수정란의 ≥2세포기, 8세포기 및 배반포 도달율이 미세주입 수정란에 비하여 유의하게 높았다. 혈청 미첨가 배지에서의 8세포기 발달율이 수정란의 종류에 관계없이 유의하게 높았으나(p<0.05; 3.3% vs. 15.5% 및 21.4% vs. 39.4%, respectively), 배반포 도달율은 유사한 경향이었다(2.7% vs. 2.3% 및 23.0% vs. 23.6%, respectively). 한편, 2ng/uL 유전자를 미세주입한 수정란의 ≥2세포기, 8세포기 및 배반포 도달율이 4 및 8ng/uL의 것에 비하여 높은 경향이었다. 미세주입 수정란의 형광발현율은 1세포기가2및 8세포기에 비하여 유의하게 높았으나(p<0.05), 4세포기 및 배반포 단계와는 차이가 없었다.

본 연구는 배양액의 종류에 따른 돼지 난자의 성숙 및 단위발생란의 배반포 형성율을 검토하였으며, 배양액의 삼투압과 발달 시기에 따른 배양액의 삼투압 변화가 돼지 단위발생란의 발달에 미치는 영향을 검토하였다. 실험 1에서 난포란을 NCSU-23 mWM 및 mKRB에 각각 성숙배양한 결과 성숙률은 62.1~71.3%로 배양액에 따른 차이가 없었다. 실험 2에서는 각각의 배양액으로 성숙된 난자를 활성화 처리 후 동일한 배양액으로 6일간 배양하여 발달율을 검토한 결과, 배반포 발육율은 NCSU-23에 배양 시 22.9%로 타 그룹(0~0.6%)보다 유의적으로 높게 나타났다(P<0.05). 실험 3에서는 단위발생란을 NaCl 안에 의해 256, 280 및 300 mOsmol(mOsm)로 조정한 NCSU-23에 6일간 배양한 결과, 배반포 발육율은 11.0~14.4%로 실험군 간에 유의적인 차이는 없었으나 삼투압이 낮을수록 난자의 fragment 비율이 높게 나타났다(P<0.05). 실험 4에서는 단위발생란을 삼투압이 조정된 세 종류의 NCSU-23에 48시간 배양한 후 삼투압이 높거나 낮은 NCSU-23으로 옮겨 4일간 추가 배양한 결과 배반포 형성율은 배양 48시간 후에 배양액의 삼투압을 낮춰 주었을 때(21.0%)가 높여 주었을 때 (11.8%) 보다 유의적으로 높게 나타났다(P<0.05).본 실험의 결과는 돼지 단위발생란의 발육이 배양액의 종류 및 삼투압에 의해 영향을 받으며, 배양액의 삼투압은 돼지 단위발생란의 발육 단계별로 영향을 주어, 초기에는 높은 삼투압의 배양액에서 배양하고 일정 시간 후 낮은 삼투압의 배양액으로 배양함으로써 발육이 증진될 수 있음을 시사한다.

수정란의 성 판별은 유전적으로 우수한 유전형질을 보유하고 있는 소의 수정란을 성 판별하므로서 희망하는 성의 송아지를 생산할 수 있으며, 부가가치가 높은 수정란을 확보할 수 있는 기술이다. 수정란의 손상을 최소화하면서 할구를 biopsy하는 기술을 개발하고, 간단하고 빠른 시간에 성 판별이 가능한 Loop-mediated isothermal amplification방법으로 수정란을 성 판별을 실시한 결과는 다음과 같다. 1. 한우 체내 수정란의 성비는 암

본 연구는 NCSU-23과 PZM-3 배양액에 EGF, 와 glucose의 첨가가 돼지 난자의 체외성숙에 미치는 영향과, 배양조건을 다르게 하여 계대배양한 섬유아세포를 이용한 핵이식 배를 다른 배양액과 산소조건에서 배양하였을 때 체외발생율에 미치는 영향을 조사하였다. 난자를 20ng/ml EGF를 첨가 또는 첨가하지 않은 NCSU-23 및 PZM-3 배양액에서 44시간 배양하였을 때 난자의 체외성숙율은 각각 와 였으며 EGF를 첨가한 배양액에서 배양한

This study was conducted to investigate the effects of different hexoses (glucose, mannose, galactose and fructose) on in vitro development of parthenogenetic embryos in the pigs. When the parthnogenetic embryos were cultured in medium with concentrations of 5mM glucose or 1mM galactose, the rates of embyos developed to morula and blastocyst stages were significantly higher than those in another culture conditions (P<0.05). However, high concentration of galactose inhibited development to morula and blastocyst stages. Addition of hexoses at early stage of porcine parthenogenetic embryos were effective for in vitro development. Especially, the embryos cultured in medium with glucose at early stage were effective for development to 2-cell and blastocyst stages compared with embryo cultured without glucose. From the present results, it is suggested that development of porcine parthenogenetic embryos can improve in medium with 5mM glucose. The concentration of 1mM galactose was also effective for development of porcine parthenogenetic embryos. It also show that parthenogenetic embryos cultured with glucose at early stage can improve in vitro development.

본 연구는 재래산양에서 복제 수정란의 생산효율을 향상시키기 위한 기초 자료를 제시하고자 체세포 핵이식을 실시하여 공핵세포의 종류, 핵이식란의 활성화 처리 방법 및 수핵난자의 조건이 체외발달율에 미치는 영향을 조사, 검토하여 핵이식란 생산을 위한 최적의 조건을 규명하고자 실시하였다. 공핵세포의 종류에 따른 핵이식란의 체외발달율은 융합이 이루어진 핵이식란의 활성화 처리 후 분할율은 귀 유래 섬유아세포를 공핵세포로 사용하였을 때가 로서 태아 유래 섬유아세포를

This study was conducted to establish the optimal temperature condition before oocyte activation in B6D2 F1 mouse. In experiment 1, two embryo culture media (CZB vs KSOM) were evaluated for the development of activated mouse oocytes. Parthenogenetic embryos cultured in KSOM showed better blastocyst development than ones cultured in CZB(56.2% vs 81.0%, p<0.01). Two-hour of pre-incubation before activation significantly reduced the number of hatched blastocysts in KSOM (22.0% versus 8.8%, p<0.05). In experiment 2, recovered oocytes were pre-incubated at different temperature conditions before activation. The experimental groups were divided by 5 as follows. Group A: pre-incubation for 120 min at 37℃, Group B: pre-incubation at 37℃ for 90 min then at 25℃ for 30 min, Group C: pre-incubation at 37℃ for 60 min then at 25℃ for 60 min, Group D: pre-incubation at 37℃ for 30 min then at 25℃ for 90 min, and Group E: pre-incubation at 25℃ for 120 min before activation. Group A (67.6%) and B (66.7%) showed better development to the blastocyst stage than other groups (Group C: 50.0%, Group D: 49.2%, Group E: 33.3%, p<0.05). The present study indicates that the temperature before activation affects the development of B6D2 F1 mouse parthenogenetic oocytes and exposure to room temperature should be limited to 30-min when the oocytes are left in HEPES-buffered medium for micromanipulation.