The aim of this study was to investigate whether addition of porcine epididymal fluid (pEF) into culture medium during in vitro maturation influences the nuclear maturation of porcine germinal vesicle (GV) oocytes. Porcine cumulus-oocyte complexes (COCs) from follicles were cultured in tissue culture medium 199 (TCM 199) containing pEF. After 48 hr of culture, oocytes were examined for evidence of GV breakdown, metaphase I, anaphase-telophase I, and metaphase II. The proportion of oocytes reaching at metaphase II (M II) stage was significantly (p<0.05) increased in oocytes cultured in the media supplemented with 10% pEF during in vitro maturation than in those without pEF regardless of cumulus presence or absence (54.6% vs 22.5%，51.7% vs 24.2%). The supplementation of pEF during maturation of oocyte enhanced oocytes maturation in a dose-dependent manner in vitro. Also significant differences (p<0.05) in the percentage of MII oocytes were observed according to exposure period in pEF. Present study suggests that pEF contains a enhancing component(s) for nuclear maturation of porcine immature oocytes in vitro.

본 연구는 북방산개구리의 난자 및 배아를 활용하여 난자성숙현상과 배아발달과정에 미치는 Cd2+의 독성효과를 조사하였다. 결과 Cd2+ 0.1ppm에서 난자의 성숙현상을 억제하였으며 Cd2+ 작용의 가역성을 조사하기 위해 3시간 동안 난자들을 Cd2+에 노출시킨 후 보통배양액으로 옮겨 17시간 배양한 결과 1ppm에서는 가역성을 나타내었으나 2.5ppm에서는 비가역적 인 손상을 주었다. 발달 중인 2세포 배아를 Cd2+의 여러 농도에 노출시킨 결과 0.1ppm에서 발달이 억제되었으며 노출시간이 길어진 32세포 시기에는 세포붕괴현상을 유발하였다. 한편, 포배기 배아를 Cd2+의 여러 농도에 노출시 켜 96시간 배양한 후 유생의 치사율 및 기형율을 대상으로 probit 분석법으로 조사한 결과 LC50은 0.1ppm, EC50은 0.08ppm, TI는 5.0을 나타내어 Cd2+은 높은 치사율을 나타내는 물질로 나타났다. 기형 양상은 척추기형이 0.05ppm에서 14.3%,꼬리기형이 0.1ppm에서 75.0%,복부기형 이 0.01ppm에서 66.7%를 나타내었고 profound형 기형이 0.1ppm에서 25.0%를 각각 나타냈으며 Cd2+ 0.1ppm에서 머리에서 꼬리까지의 성장을 억제하였다. 결론적으로 본 연구의 결과들은 Cd2+이 난자성숙, 난할 및 배아의 발달과정에 높은 독성의 효과를 가짐을 나타낸다.

본 연구에서 돼지 난포란에서 채취된 난모세포들을 체외 성숙 후 세포 손상이 없이 성숙 난모세포의 발생능을 알아낼 수 있는 마커로 극체의 방출이 효과적으로 활용될 수 있는지를 알아보았다. 난모세포를 48시간 성숙 배양 후 극체의 방출 유무를 검사하고, 핵염색하여 염색체의 형태를 검사하였다. 확인된 난모세포들을 시간 추가 배양한 후 7% ethanol로 활성화시키고 cytochalasin B에 5시간 노출 후 NCSU23 배양액으로 7일간 배양하였다. 극체

Cyclin B1 is known to reflect the M-phase promoting factor (MPF), a universal regulator of G2/M-phase transition, activity during the process of oocytes maturation. To investigate whether culture condition affects the maturation rate and the expression of cyclin B1 protein, bovine immature oocytes are stimulated and cultured according to the following protocols: Experiment 1: denuded oocytes (denude) only, COC only, denuded oocytes + granulosa cells (denude + GCs) and COC + GCs; Experiment 2: no-activation (control), 7% ethanol for 5 min and 10 l/ml ionomycin for 5 min at immediately before maturation. The maturation rates of denude and no-activation group were significantly lower in both experiments (P<0.05), respectively. Co-culture or stimulation method in bovine immature oocytes culture increases the cyclin B1 expression significantly in both experiments (P<0.05). Based on these results, culture condition affects the maturation rate and the expression of cyclin B1 protein during the first meiotic maturation in bovine immature oocytes.

본 연구는 돼지 체외 수정란의 생산에 있어서 체외성숙 시간이 핵성숙, 다정자 침입율 및 배 발생과 배반포의 부화율 배반포의 부화에 미치는 효과를 검토하였다. 돼지 난포란의 핵성숙율이 체외성숙 36, 38, 40, 42 및 44 시간째에 각각 68.0, 78.0, 79.5, 73.8 및 81.8%로서 각 군간에 유사한 경향이었으며, 체외 수정 후 다정자 침입율도 각각 48.7, 36.0, 44.4, 38.9 및 31.8%로서 차이가 없었다. 체외 성숙 시

본 연구는 돼지 수정란의 체외 성숙 및 체외 배양액의 retinol 첨가 효과를 규명하기 위하여 체외 성숙 및 체외 배양액에 retinol을 첨가하여 수정란의 체외 발달에 미치는 영향을 구명하고자 수행되었다. 체외 성숙 배양액에 retinol을 첨가한 결과 성숙율은 으로 각 처리구 간의 유의적인 차이가 없었다(p>0.05). 체외 수정 후 배반포로의 발달율은 첨가구에서 의 발달율을 나타내어 타 처리구에 비하여 유의적으로(p<0.05) 높게 나타났으며,