본 연구는 도축돈의 난소로부터 난자를 채취하여 체외배양시킨 후 세포 안정제와 원심분리 그리고 OPS를 이용한 유리화동결 하였다. 동결 융해한 수정란을 경산돈에 외과적 또는 비외과적으로 이식하여 자돈을 생산하는 것을 목적으로 수행하였다. 도축돈 난소로부터 채란되어진 돼지 미성숙난은 Funahashi 등(1994) 방법에 따라 체외 성숙-수정-배양하였다. 체외배양액은 glucose-free NCSU 23을 이용하였으며, 5일째에 10% Fatal bovin

김치를 10℃에서 8일간 숙성시켜 산도 0.6~0.7%로 숙성된 김치를 -70℃와 -20℃로 냉동하여 -20℃에서 저장하면서 배추 조직의 elasticity, hardness, 세포 조직의 변화, 드립양을 실험한 결과는 다음과 같다. -70℃에서 급속 동결한 것과 -20℃에서 완만동결한 냉동 김치중 배추조직의 elasticity는 냉동저장 15일까지 감소하다 일정하게 유지되었고 hardness는 거의 변화가 없었으며 냉동 방법에 따른 변화도 거의 나타나지 않았다. 투과 전자현미경으로 관찰한 결과 control의 경우 세포벽이 매우 두꺼우며 세포의 모양들이 잘 보존되어 있는 것을 볼 수 있었고 -20℃로 냉동 처리하여 해동시킨 세포벽들은 많이 손상되어 있음을 볼 수 있었으며 -70℃로 급속 냉동 시료의 경우 세포벽의 손상 정도가 -20℃로 냉동 처리한 시료보다 덜 파괴되어 있음을 볼 수 있었다. 한편 냉동 저장기간 동안 드립의 손실량의 변화는 -70℃로 냉동 처리한 시료의 드립양은 3~4%정도로 -20℃로 냉동 처리한 시료의 5~6%에 비해 적은 것을 알 수 있었다.

정자의 동결보존을 위한 새로운 기술개발 목적은 동결과정에서 최소한의 손상으로, 응해 후 최대한 높은 활력도의 정자를 얻는 것이다 정자가 난자와 수정하기 위해서는 적당한 생존성과 운동성을 유지해야 하는데, 가장 일반적인 방법으로는 정자의 진진 운동성과 첨체의 정상 여부 및 형태 검사방법 등이 있다 본 연구는 사람 정액을 동결보존 할 때 semi-programmable freezer를 이용한 완만동결 방법과, 액체질소의 vapor를 이용한 급속동결 방법이

개의 인공수정에 사용할 정자의 보존방법을 확립하기 위하여, 동결속도와 응해 온도를 설정하여 적절한 동결방법을 정립하고자 본 실험을 실시하여 다음과 같은 결과를 얻었다. 동결의 방법에 있어서는 액체질소의 표면으로부터 17 cm 높이에서 동결하는 -3/min의 동결속도로 실시하여 37에서 2분간 응해하는 방법이 가장 좋은 결과를 보였다. 생존성과 운동성에 있어서의 차이는 없지만 첨체의 intact한 비율은 약간 낮은 결과를 보였으며, 이의 보완을 위해, 액

본 연구는 OPS 방법에 의한 돼지미성숙 및 성숙난자의 동결-융해 후 난자의 생존성에 있어서 난구세포의 영향을 검토하였다. 그 결과 미성숙 난자의 동결-융해 후의 성숙율은 난구세포의 부착 (25%) 및 제거 (15%)시 유의적인 차이는 인정되지 않았지만 control group (62%)에 비해서는 유의적으로 낮게 나타났다(P<0.05). 미성숙난자의 동결-융해 후 체외성숙시킨 난자의 체외수정시 난구세포 제거시 (19%), 부착된 (9%) 난자에 비해

본 연구는 소 체외성숙, 체외수정 유래 배반포의 초자화 등결 시 동해방지제의 평형방법과 응 해 후 동해방지제의 희석방법이 수정란의 생존성에 미치는 영향을 검토하고자 실시하였다. 초자화 동결액은 20% FBS(Gibco)가 첨가된 D-PBS에 20% glycerol, 20% ethylene glycol, 3/8 M sucrose, 3/8 M deftrose 가 함유된 GESD를 사용하였다. 동결 전 평형방법은 3단계 (El), 2단계 (E2), 1단계(E

The effect of superovulation (PMSG, FSH) on the ovarian response of matured cows were tested. The survival rates of bovine embryos and ovarian oocytes frozen by slow, rapid freezing and vitrification were investigated. A total of 15 heads of cow were devided into 3 groups by injection dose of GTH (PSMG, FSH). Each group was superrovulated with injections of 2, 500, 3, OOOJU PSMG and 40mg FSH followed by injection of 30mg PGF2a. Embryos were non-surgically recovered from superovulated cows 6~7days after estrus. The recovered embryos were frozen in 10% glycerol + 10% sucrose by slow and rapid freezing. Ovarian oncytes were frozen in 20% g]ycerol+l0% ethylene glycerol + 30% Ficol + 10% sucrose by vitrification and the survival of frozen embryos and ovarian oncytes were judged by FDA-test. The results are summarized as follows; 1. Estrus after the injection of 2500, 3000 I.U. PMSG and 4Omg FSH were 32.8, 35.0 and 43.4 and the duration of estrus were 18.6, 18.8 and 22.4 hours respectively. 2. The average sizes of the left ovaries were 5.4cm (2, 500 IU PMSG), 5.1cm (3, OOOIU PMSG) and 6.4cm (FSH), and the right were 6.2cm (2, 5001U PMSG), 5.7cm (3, OOOIU PMSG) and 7.&m (FSH) respectively. There were significant differences in the right overies among treatments (P<0.05). 3. The average number of ovarian follicles in the left ovaries were 4.8 (2, 500 IU PMSG), 5.2(3, 000 IU PMSG) and 7.8 (FSH) respectively. There were significant difference in the right ovaries among treatments (P<0.05). 4. In the average numbers of ovulation points in the left ovaries were 3.0 (2, 5001U PMSG), 3.2 (3, OOOIU PMSG) and 4.4 (FSH) respectively, and the right were 7.2 (2, 5001U PMSG), 7.8(3, 000IU PMSG) and 11.4 (FSH). There were significant differences in the right ovaries among treatments (P<0.05). 5. The numbers of the recovered embryos were 20 (2, 5001U PMSG), 19 (3, 000 IU PMSG) and 21 (FSH) respectively, and oncytes and degenerted oncytes were 6.5 and 11.0 Estrus periods of post parturation were 52.4days (2, 5001U PMSG), 69.8days (3, OOOIU PMSG) and 62.4days (FSH) respectively. 6. The FDA score of cow morulae frozen by slow freezing, sernirapid frezing and vitrified freezing was higher in slow (3.1) and vitrified freezing (3.0) than that in semirapid freezing (1.28). The FDA-scores of cow, pig and rabbit ovarian oocytes frozen in 20% glycerol + 10% ethylene glycol + 30% Ficoll + 10% sucrose by vitrification were higher in cows (3.3) than both in pigs (2.6) and rabbits (2.3).

This paper reviews the most important steps that have generated consistent progress in principles and developmental progress of embryo cryopreservation, and also study on freezing procedure and its application by conventional method and current improved method for freezing procedure and its appilcation of embryo cryopreservation in farm animals. Four were of particular interest: 1.The transport of water across the ccli membrane (zona pellucida) during freezing and thawing accordinglyplays a role in determing whether the celi survives. This movement of water is controlied mainly by extracellular phase changes and by the nature and concentration of any cryoprotective agent present. Therates of cooling, freezing and warming, and the intervals over which they are applied are further decisi've factors in determining whether a cryopreservation procedure allows survival after thawing. 2.The first successful deep freezing experiments with sheep morula and blastocysts during the seventies were based on the early procedures used for mouse embryos.Current research during the eighties is developed with the aim of simplifying and improving current procedures such as one-step dilution and rapid or ultra-rapid cooling by using the model of laboratory animals. 3.The conventional method for the embryo cryopreservation is described. An alternative to this method which may result in high survival and also in reducing of the freezing and thawing time is done by combing a permeable cryoprotectant such as glycerol, DMSO or propanediol and a non-permeable compound such as sucrose, trehalose, raffinose or lactose. 4.Finally a different approach to the preservation of embryos, named vitrification, is introduced. This procedure depends upon the ability of concentrated solutions of cryoprotective agents such as glycerol and propanediol to supercool to very low temperature (-196) during rapid cooling before solidifying without formation of ice. However, more complete data are necessary for successful vitrification of blastocysts.